ФГБНУ «Федеральный центр токсикологической, радиационной и биологической безопасности», г.Казань (420075, г.Казань, Научный городок-2, тел. (843)239-53-20, e-mail: vnivi@mail.ru).

На территории Российской Федерации имеется ряд регионов, где высокая концентрация населения и разного рода производств ухудшают экологическую обстановку. Антропогенные нагрузки в таких регионах достигают критической величины, при которой сопротивляемость природных комплексов исчерпана полностью или близка к этому состоянию. В работе представлена информация об уровне загрязнения тяжелыми металлами кормов и воды для животных в Рязанской области. Тяжелые металлы (ТМ) проявляют широкое токсическое воздействие. Некоторые из них, например, свинец, оказывает ярко выраженное воздействие на многочисленные органы, тогда как другие – кадмий – имеет более ограниченную область токсического воздействия. Особенностью металлов как загрязнителей является то, что в отличие от органических загрязняющих веществ, подвергающихся процессам разложения, металлы способны лишь к перераспределению. Поэтому возможно их накопление в почве, воде и кормах до значительных уровней, способных оказать отрицательное влияние на состояние здоровья и продуктивность животных. Для исследования качества кормов и воды были отобраны пробы в животноводческих хозяйствах ООО «Заря», «Рассвет» Рязанского р-на, ООО «Жито», «Вакинское Агро» Рыбновского р-на. Определение тяжелых металлов (свинец, кадмий, медь, цинк) проводили по ГОСТу 30178-96 (атомно-абсорбционный метод), количество мышьяка по ГОСТу 26930-86 (колориметрический метод), концентрацию ртути  по ГОСТ 26927-86 (метод холодного пара на анализаторе «Юлия-5К»). Установлено, что в большинстве проб сырья животного и растительного происхождения, содержание тяжелых металлов не превышает максимально допустимый уровень. В некоторых образцах кормов и воды выявлено повышенное содержание тяжелых металлов.

1. Селиверстов, В.В. Комплексная экологически безопасная система ветеринарной защиты здоровья животных: методические рекомендации / В.В.Селиверстов, А.Г.Шахов. – М., 2000. – 238 с. 

2.СанПиН 2.1.4.1074-01 Питьевая вода. Гигиенические требования к качеству воды централизованных систем питьевого водоснабжения. Контроль качества. – М.: Минздрав России, 2002. – 103 с. 

3. ВетПиН 13.7.1-00. Ветеринарные правила и нормы. – М., 2001. 

4. СанПиН 2.3.2.1078-01. Санитарные правила и нормы. –М., 2002. 

5. Жуленко, В.Н. Ветеринарная токсикология / В.Н.Жуленко, М.И.Рабинович, Г.А.Таланов. – М., 2002. –236 с.

6. Экологические и медико-социальные аспекты охраны природной среды и здоровья населения: монография / В.Г.Макарова, А.Р.Цыганов[и др.]. – Минск: бит «Хата», 2002. – 50 с. 

7. Методические указания по определению тяжелых металлов в почвах сельскохозяйственных угодий и продукции растениеводства. – М., 1992. 

8. МИ 2740-2002. Государственная система обеспечения единства измерения. Массовая доля общей ртути в пищевых продуктах и продовольственном сырье. Методика выполнения измерений атомно-абсорбционным методом. – Казань, 2002. – 10 с.

1ФГБОУ ВО «Южно-Уральский государственный аграрный университет», г.Троицк (457100, г.Троицк, Гагарина, 13, e-mail: kdiagugavm@inbox.ru).

 

2ФГБОУ ВО «Казанская государственная академия ветеринарной медицины им. Н.Э.Баумана», г.Казань (420029, г. Казань, Сибирский тракт, 35, e-mail: terapia_kgavm@mail.ru).

Бронхолегочная патология растущего молодняка крупного рогатого скота в условиях техногенно-загрязнённой местности имеет широкое распространение, наносит значительный экономический ущерб сельскохозяйственному производству по причине снижения роста и развития животных, преждевременной их выбраковки, а иногда и падежа, а применяемые схемы лечения в этих условиях имеют, низкий терапевтический эффект. При отмеченной патологии имеет место нарушение всех видов обмена веществ, но наиболее выраженные изменения, имеют показатели обмена белковых соединений. Причины развития бронхопневмонии телят многообразны, но в условиях высоких техногенных нагрузок ведущее место принадлежит солям тяжёлых металлов, которые через кормовые рационы регулярно поступают в организм, изменяют течение всех обменных процессов, снижают факторы неспецифической защиты организма и вовлекают в патологический процесс центральный орган обмена – печень, изменяя её функциональное состояние. Постоянная контаминация организма тяжёлыми металлами приводит к поражению гепатоцитов печени, что способствует нарушению её белковосинтетической функции, изменению классового состава белков крови и активности основных ферментов переаминирования. Проведёнными исследованиями установлено, что у 32% телят от числа исследованных выявлены характерные для бронхопневмонии клинические признаки. Традиционные методы лечения отмеченной патологии применяемой в хозяйстве в полной мере не обеспечивают высокого терапевтического эффекта, что требует разработки способа лечения бронхопневмонии в условиях техногенеза. Научно-разработанный способ лечения бронхопневмонии телят путём сочетанного применения минерального энтеросорбента вермикулита и химиотерапевтического препарата байтрила, а также методов симптоматической терапии позволяет в сравнительно короткие сроки нормализовать показатели обмена белковых соединений, клинический статус больных бронхопневмонией телят, снизить токсические нагрузки на основные органы «мишени» (печень; почки), купировать воспалительный процесс.

1. Ахтямов, Р. Я. Экологические аспекты применения вермикулита в сельском хозяйстве / Р. Я. Ахтямов // Экологические проблемы сельского хозяйства и производства качества продукции : тез.докл. Всерос. конф., посвящ. 20-летию Уральского филиала ВНИИВСГЭ / ВНИИ ветеринар.санитарии, гигиены и экологии, Урал. фил. – Москва ; Челябинск, 1999. – С. 16–18.

2. Вернадский, В. И. Биогеохимические очерки / В. И. Вернадский. – Москва ; Ленинград : Наука, 1956. – 358 с.

3. Гертман, А. М. Особенности лечения бронхопневмонии телят в техногенной провинции Южного Урала / А. М. Гертман, К. Х. Папуниди // Актуальные проблемы патологии животных : материалы Междунар. съезда терапевтов, диагностов. – Барнаул, 2005. – С. 43–44.

4. Гертман, А. М. Фармакокоррекция обменных процессов в организме высокопродуктивных коров в условиях Челябинской области / А. М. Гертман, Т. С. Самсонова // Аграрный вестник Урала. – 2012. – № 5 (97). – С. 29–31.

5. Методы ветеринарной клинической лабораторной диагностики : справочник / под ред. И. П. Кондрахина. – Москва :КолосС, 2004. – 520 с. : ил.

6. Никулина, Н. Б. Неспецифическая бронхопневмония телят : монография / Н. Б. Никулина, В. М.Аксенова ; ФГБОУ ВПО Пермская ГСХА. – Пермь, 2012. – 136 с.

7. Папуниди, К. Х. Влияние иммуностимулятора «Достим» и «Янтарос плюс» на неспецифическую резистентность телят, больных бронхопневмонией / К. Х. Папуниди, Д. М. Мухутдинова //Материалы Всероссийской научно-производственной конференции по актуальным проблемам ветеринарии и зоотехнии / Казанская акад. ветеринар.медицины. – Казань, 2002. – Ч. 2. – С. 58–59.

ФГБНУ «Всероссийский научно-исследовательский институт радиологии и агроэкологии», г.Обнинск (249032, Калужская область, г. Обнинск, Киевское шоссе, 109 км; e-mail: nar@obninsk.org).

Целью настоящего исследования было изучение влияния свинца на гуморальные и клеточные факторы естественной резистентности организма овец при хроническом поступлении нитрата металла с кормом в концентрациях 1, 5 и 30 МДУ. Эксперименты были выполнены на 12 овцах романовской породы, разделенных на 4 группы по принципу аналогов. Кормление овец осуществляли дважды в сутки при свободном доступе к воде. Животным трех подопытных групп скармливали по 1, 5 и 30 МДУ свинца в рационе (5, 25, 150 мг/кг корма). Нитрат свинца задавали с комбикормом 1 раз в сутки во время утреннего кормления. Четвертая группа являлась контролем. Кровь отбирали из яремной вены овец утром, перед кормлением, до начала эксперимента и на 7-е, 14-е, 28-е, 42-е, 56-е, 70-е, 90-е сут исследования. Естественную резистентность овец оценивали по бактерицидной, лизоцимной, ?-литической и фагоцитарной активности плазмы крови. Хроническое поступление свинца с рационом в организм овец в концентрациях 1, 5 и 30 МДУ выявило разнонаправленный характер изменения гуморальных и клеточных факторов естественной резистентности. Сравнительный анализ оцениваемых показателей продемонстрировал наличие четкой реакции бактерицидной и бетта-литической активности плазмы крови, а так же фагоцитарного числа на поступление металла в организм животных. Наиболее выраженные изменения гуморальных и клеточных факторов естественной резистентности отмечали при максимальной концентрации свинца в кормах. Полученные результаты свидетельствуют о снижении естественной резистентности организма. При этом степень изменения гуморальных и клеточных факторов естественной резистентности зависит не только от концентрации свинца в кормах, но и от продолжительности его поступления в организм. Поэтому, в реальных условиях ведения животноводства на техногенно загрязненных территориях, хроническое воздействие соединений свинца, поступающего в организм продуктивных животных с кормом, может быть одним из факторов повышенной заболеваемости. Полученные экспериментальные данные дают основание для более жесткого контроля содержания свинца в их рационе.

1ФГБНУ «Федеральный центр токсикологической, радиационной и биологической безопасности», г.Казань (420075, г.Казань, Научный городок-2, тел.(843)239-53-20, e-mail: vnivi@mail.ru).

2Предприятие «ПромАсептика», г.Казань (420140, г.Казань, ул.Минская, д.6, оф.136, тел.(906)323-85-31, e-mail: swa862@mail.ru).

В настоящий момент нет единого мнения о том, через какие отделы пищеварительного тракта возбудитель сибирской язвы проникает в организм хозяина при алиментарном заражении. Учитывая разноречивость имеющихся литературных данных и в соответствии с заданием, нами были  проведены исследования по оценке различных методов заражения и разработке наиболее эффективной технологии экспериментального заражения крупного рогатого скота, который мог бы быть использован в ветеринарной практике для оценки эффективности специфических средств терапии и профилактики сибирской язвы. Для решения поставленного вопроса было проведено 3 серии опытов на неиммунизированном против сибирской язвы молодняке крупного рогатого скота 7-8-месячного возраста. Таким образом, в результате проведенных исследований разработан способ заражения крупного рогатого скота со 100%-ным летальным исходом. Разработанный способ заражения открывает широкие возможности для изучения иммуногенеза при сибирской язве, длительности иммунитета, определения оптимальных доз вакцины, применяемых для профилактики этого заболевания и тем самым будет способствовать усовершенствованию средств иммунопрофилактики сибирской язвы крупного рогатого скота.

1. Шляхов, Э.Н. Сибирская язва (очерки эпидемиологической, лабораторной диагностики и профилактики) / Э.Н.Шляхов, Е.В.Груз, В.И.Присакарь // Кишинев, 1975. – 162 с.

2. Шувалова, Е.П. Инфекционные болезни / Е.П. Шувалова // 2 издание, М.: Медицина, 1982. – 556 с.

3. Сибирская язва / П.Н. Бургасов, Б.Л. Черкасский, Л.М. Марчук [и др.]. – М., 1970. – 127 с.

4. Коротич, А.С. Сибирская язва / А.С. Коротич, Л.И. Погребняк/ – Киев: Урожай, 1976. – 159 с.

5. Черкасский, Б.Л. Сибирская язва – руководство по зоонозам / Б.Л.Черкасский, П.Н.Бургасов, под ред. В.И. Покровского. – М.: Медицина, 1983. – С. 207-217.

6. Василевич, А.И. Случай сибиреязвенной септицемии у свиней / А.И. Василевич // Ветеринария. - 1946. - № 2-3. – С.45.

7. Дерижанов, С.М. Патологическая анатомия и патогенез кишечной формы сибирской язвы / С.М. Дерижанов. – Смоленск, 1935. – 62 с.

8. Hruska, K. Infektion, Vakzination and Immunitat beim sogenanten interlichen Milzbrand / K.Hruska // sbl. Bakt. J. Abt. Orig. – 1927. – Bd. 102. – P. 174.

9. Жуков, М.Д. Возможность спонтанного заражения белых мышей сибирской язвой / М.Д.Жуков // Труды Военно-ветеринарной академии РККА. Т.1. – М., 1939. – С. 351-358.

10. Учебник физиологии / К.М.Быков, Г.Б.Владимиров, В.Е.Делов [и др.]. – М.: Медгиз, 1954. – 892 с.

11. Лавров, Л.В. О септической форме сибирской язвы / Л.В.Лавров, Г.В.Покровский // Труды Горьковского мед.ин-та. – Т.18. – Горький, 1964. – С. 154-157.

13. Соловьев, Н.С. Патологическая анатомия кишечной формы сибирской язвы у человека – по данным Ярославской эпидемии / Н.С. Соловьев // Труды 1 Всесоюз. съезда патологоанатомов. – Киев: Научная мысль, 1929. – С.218-224.

14. Голковский, М.Д. Сибирская язва у человека / М.Д.Голковский // Здоровье Белоруссии. – 1970. - №2. – С.87.

ФГБНУ «Уральский федеральный аграрный научно-исследовательский центр Уральского отделения Российской академии наук» (ФГБНУ УрФАНИЦ УрО РАН), г.Екатеринбург (620142, г.Екатеринбург, Белинского, 112а, а/я 269, тел.: +7(343) 257-20-44, e-mail: info@urnivi.ru).

Важнейшим условием для снижения напряженности эпизоотической ситуации по вирусной диарее крупного рогатого скота и сокращения экономических потерь от данной инфекции является создание программ комплексной защиты поголовья от данной инфекции, включающих мероприятия по специфической вакцинопрофилактике. Целью данной работы стало изучение влияния вакцинации репродуктивного стада инактивированной моновакциной «Бовилис BVD» (MSD Animal Health, Нидерланды) на уровень сохранности молодняка крупного рогатого скота. Коровы перед осеменением были вакцинированы инактивированной моновакциной «Бовилис BVD». Уровень специфических поствакцинальных антител к возбудителю вирусной диареи крупного рогатого скота у коров за 1 месяц до отела составлял 6,1±1,9 log2. У рожденных от них телят до выпойки молозива титр специфических антител в сыворотке крови находился на уровне 2,0±0,7 log2, после выпойки молозива – 6,4±1,7 log2. Пассивный специфический иммунитет к возбудителю вирусной диареи крупного рогатого скота у телят сохранялся в течение 30 дней. До введения плановой вакцинации коров перед осеменением инактивированной моновакциной «Бовилис BVD» отход телят в обследованном хозяйстве по причине факторных инфекций составлял 15,6%. При внедрении программы активной вакцинации репродуктивного стада против возбудителя вирусной диареи крупного рогатого скота в течение 5 лет произошло снижение уровня потерь стельности на 20%, показателя отхода телят по причине факторных инфекций в 4 раза. Вакцинация коров-матерей перед осеменением моновакциной «Бовилис BVD» обеспечивает высокий уровень пассивного иммунитета к возбудителю вирусной диареи крупного рогатого скота у новорожденных телят, снижает риск инфицирования молодняка возбудителем ВД и развитие острых форм заболевания в период физиологического созревания телят.

1. Вакцины и вакцинация: национальное руководство / под.общ. ред. В.В.Зверева, Б.Ф.Семенова, Р.М.Хаитова. – М.: Геотар-Медиа, 2011. – 880 с.

2. Глотов, А.Г. Вирусная диарея: значение в патологии воспроизводства крупного рогатого скота / А.Г.Глотов, Т.И.Глотова //Ветеринария. – 2015. – № 4. – С. 3–8.

3. Сергеев, О.В. Иммунобиологические и патогенетические особенности вирусной диареи / О.В.Сергеев // Ветеринария Кубани.– 2009. –№ 5. –С. 23–26.

4. Таточенко, В.К. Иммунопрофилактика-2011: справочник/ В.К.Таточенко, Н.Л.Озерецкий. – М.: Изд-во «Союз педиатров России», 2011. – 198 с.

5. Применение инактивированной вакцины «Хипробовис-4» для профилактики ОРВИ в хозяйствах Свердловской области / Е.Н.Шилова[и др.]// Ветеринария. – 2014. – № 11. – С. 15–17.

6. Шкуратова, И.А. Ветеринарно-санитарные аспекты профилактики болезней молодняка крупного рогатого скота в современных промышленных комплексах / И.А.Шкуратова, Е.Н.Шилова, О.ВСоколова // Российский журнал Проблемы ветеринарной санитарии, гигиены и экологии. – 2015.– № 3 (15). – С. 60–63.

7. Control of bovine viral diarrhea virus in ruminants/ P.H.Walz[et al.]//J. Vet. Intern. Med. – 2010. – № 24. – P. 476–486.

8. Evaluation of vaccination program by commercial polyvalent vaccines for bovine viral diarrhea and infectious bovine rhinotracheitis based on neutralizing antibody response/ A.Ito[et al.] //J. Japan Veter. Med. Assn. – 2008.–Vol.61,№ 1. – P. 39–42.

9. Givens, M.D. Perspective on BVDV control programs/ M.D.Givens, B.W.Newcomer//Animal Health Research Reviews. – 2015. – 16(1). – P. 78–82.

10. Ryaposova, M.V. Bovine viral diarrhea of cattles in the Ural region / M.V.Ryaposova, E.N.Shilova// Reproduction in Domestic Animals. – 2014. –№ 3(49). – P. 92.

1Vatsayev S. V. – Candidate of Veterinary Sciences; 2Chernykh O.Yu. – Doctor of Veterinary Sciences, professor; 3Chernov A.N. – Doctor of Biological Sciences; 4Lysenko A.A. – Doctor of Veterinary Sciences, professor.

1ФГБОУ ВО «Чеченский государственный университет», г.Грозный (364097, г.Грозный, ул.Шерипова, 32, e-mail: chgu@mail.ru).

2ГБУ КК «Кропоткинская краевая ветеринарная лаборатория», г.Кропоткин (352380, г.Кропоткин, ул. Красноармейская, 303, е-mail: gukkvl50@kubanvet.ru).

3ФГБНУ «Федеральный центр токсикологической радиационной и биологической безопасности», г. Казань (420075, г.Казань, Научный городок-2, е-mail: vnivi@mail.ru).

2,4ФГБОУ ВО «Кубанский государственный аграрный университет», г. Краснодар (350044, г.Краснодар, ул. Калинина, 13).

Статья посвящена проблеме нодулярного дерматита крупного рогатого скота (НД КРС), вызываемого вирусом Neethling из рода Capripox virus семейства Poxviridae. Заболевание имеет тенденцию к широкому распространению, в результате чего представляет угрозу для экономики и продовольственной безопасности не только одного региона, но и в целом страны. Установлено, что НД КРС в Чеченской Республике имеет повсеместное распространение и наносит животноводству значительный экономический ущерб. Проведение комплекса исследований обусловлено необходимостью обеспечения ветеринарного благополучия по данной болезни и разработке научно-обоснованной системы лечебно-профилактических мероприятий по оздоровлению территории Чеченской Республики от НД КРС. Приведённые данные базируются на анализе эпизоотической ситуации по нодулярному дерматиту в Чеченской Республике за период 2015-2016 гг. 

1. Нодулярный дерматит / А.Я.Самуйленко, Б.В.Соловьева, Е.А.Непоклонова, Е.С.Воронина // Инфекционная патология животных. Т. 1. – М.: ИКЦ «Академкнига», 2006. – С. 782–786.

2. Список МЭБ и трансграничные инфекции животных: монография / В.В.Макаров, В.А.Грубый, К.Н.Груздев, О.И.Сухарев. – Владимир: ФГБУ «ВНИИЗЖ», 2012. – С. 76–79.

3. Scientific opinion on lumpy skin disease // EFSA Journal. – 2015. – № 13 (1). – 3986. – 73 р.

4. Tuppurainen, E.S.M. Lumpy Skin Disease: An Emerging Threat to Europe, the Middle East and Asia / E.S.M.Tuppurainen, C.A.L.Oura // Transboundary and Emerging Diseases. – 2011. – № 59. – Р. 40–48.

5. Конакова, А.С. Эколого-фаунистическая характеристика гельминтозов лошака и мула на Центральном Кавказе и меры борьбы с гельминтозами: автореф. дис. … канд. биол. наук / А.С.Конакова. – М., 2003. – 189 с.

6. Природа Чечено-Ингушской республики, ее охрана и рациональное использование / В.В.Рыжиков [и др.]. – Грозный: Чечено-Ингушское кн.изд-во, 1991. – 160 с.

ФГБНУ «Федеральный центр токсикологической, радиационной и биологической безопасности», г.Казань (420075, г.Казань, Научный городок-2; тел. +7(843)239-53-49, е-mail:vnivi@mail.ru).

Представлены эпизоотологические данные по заболеванию коз вызванные возбудителем хламидиоза. Описаны клинические признаки заболевания, которые сопровождались абортами, мертворождаемостью и рождением козлят гипотрофиков. Абортированные плоды и мертворожденные козлята были 4-5-мес. возраста и имели признаки гипотрофии: низкую массу тела, отсутствие волосяного покрова в области головы, конечностей. У новорождённых козлят наблюдали проявление клинических признаков на 5-6 сут после рождения. Заболевание проявлялось в виде бронхопневмонии, конъюнктивита, артрита запястных или скакательных суставов. При лабораторном исследовании проб сыворотки крови на хламидиоз в реакции связывания комплемента со специфическим хламидийным антигеном реагировало 23% из числа обследованных животных. Наиболее высокий процент заболевания хламидиозом был выявлен у козлов-производителей – 40% и новорожденных козлят – 20%. При микроскопии мазков-отпечатков из патологического материала от абортированных плодов и мертворожденных козлят обнаруживались хламидии в 75% случаев. Микроскопические исследования были подтверждены выделением возбудителя хламидиоза из патологического материала (абортированных плодов, козлят гипотрофиков) путем серийных пассажей на развивающихся куриных эмбрионах в 50% изучаемых проб.

1. Джупина, С.И. Методы эпизоотологических исследований / С.И.Джупина, А.А.Колосова. – Новосибирск: Наука. Сибирское отделение, 1991. – 56 с.

2. Ковалев, В.Л. Энзоотический аборт коз / В.Л.Ковалев//Материалы науч. конф. Таджикского НИВИ. – Душамбе,1971. – С.7–9.

3. Хамадеев, Р.Х. Хламидиоз крупного рогатого скота / Р.Х.Хамадеев, Ф.М.Хусаинов, А.З.Равилов // Ветеринария. – 1990. – №2. – С.42–45.

4. Профилактика и лечение хламидиоза крупного рогатого скота и свиней / Ф.М.Хусаинов, В.В.Евстифеев [и др.] // Ветеринарный врач. – 2000. – №4. – С.14–16.

5. Хусаинов, Ф.М. Распространенность хламидиоза рогатого скота в регионе Среднего Поволжья, Предуралья и специфическая профилактика / Ф.М.Хусаинов, А.Н.Чернов, В.В.Евстифеев // Ветеринарный врач. – 2011. – №3. – С. 6.

6 Евстифеев, В.В. Разработка и усовершенствование биологических препаратов для диагностики и специфической профилактики хламидиоза животных: автореф. дис…д-ра биол. наук. – Казань,2015. – 46 с.

ФГБНУ «Всероссийский научно-исследовательский институт фундаментальной и прикладной паразитологии животных и растений им.К.И.Скрябина», г.Москва (117218, Россия, Москва, ул.Б.Черемушкинская, 28, e-mail: secretar@vniigis.ru).

Приведены данные о высокой инвазированности клещей рода Dermacentor, которые являются переносчиками бабезиоза и эрлихиоза плотоядных животных, экстенсинвазированность (ЭИ) составила 76%. Всего было собрано 873 живых клеща: 414 с растительности и 459 с собак. В иксодофауне Московской области большинство составляют клещи Dermacentor reticulatus и Rhipicephalus sanguineus, но за последние годы участились находки таежного клеща Ixodes persulcatus. Для подтверждения диагноза на бабезиоз использовали микроскопию мазков крови, окрашивая по Романовскому-Гимзе, а также исследуя сыворотку крови серологическим методом – ИФА и методом ПЦР. Наибольшая зараженность бабезиями у собак отмечена в возрасте от 1 до 6 лет и старше ЭИ – 28,9–29,7 %. У собак охотничьих пород ЭИ составила 25,9%, служебных – 44,9% и декоративных – 29,2%. Использованный нами препарат «Дипрокарб» в дозе 6 мг/кг массы животного однократно подкожно показал 100% эффективность при спонтанном бабезиозе собак разных пород. После введения препарат быстро всасывается в кровь и удерживается на пироплазмостатическом уровне в течение 4-6 недель. Накапливается имидокарб в основном в почках и печени; выводится из организма преимущественно с мочой. Во время лечения больных бабезиозом животных применяли также симптоматическую терапию. С профилактической целью дипрокарб применялся у клинически здоровых охотничьих собак в дозе 0,25 мл на 10 кг массы животного, так как другие меры защиты в виде ошейника и капель в момент охоты были не эффективны.

1. Паразитология и инвазионные болезни животных / М.Ш.Акбаев [и др.]. – М.: Колос, 1998. – 743 с.

2. Балашов, Ю.С. Иксодовые клещи-паразиты и переносчики инфекций / Ю.С.Балашов. – СПб.: Наука, 1998. – 61 с.

3. Беломытцева, Е.С. Действующие вещества, входящие в состав современных препаратов против кровопаразитарных инвазий, переносимых иксодовыми клещами / Е.С.Беломытцева, Р.Т.Сафиуллин // Ветеринария. – 2017. – № 1. – С. 35–37.

4. Каталог ветеринарных препаратов компании «Инвеса». – М., 2012. – 96 с.

5. Арахноэнтомозы сельскохозяйственных животных: учеб. пособие для вузов / Э.Б.Кербабаев, Ф.И.Василевич, Т.С.Катаева, М.В.Розовенко. – М.: МГАВМиБ им. К.И. Скрябина, 2000. – 136 с.

6. Кирк, Р. Современный курс ветеринарной медицины Кирка / Р.Кирк, Д.Бонагура; пер. с англ. – М.: Аквариум, 2005. – 1376 с. 

7. Коняев, С.В. Бабезиоз / С.В.Коняев // Мир ветеринаров: сайт. – http://www.veterinars.com/parazitologiya / бабезиоз-собак.html.

8. Лебедева, В.Л. Пироплазмоз собак / В.Л.Лебедева // Доклады Всесоюзного съезда протозоологов. – Витебск, 1992. – № 4. – С. 85. 

9. Плохинский, Н.А. Математические методы в биологии: учебно-методическое пособие для студентов биологических факультетов университетов / Н.А.Плохинский. – М.: МГУ, 1978. – 265 с.

10. Сафиуллин, Р.Т. Комплексная программа по оздоровлению животных от паразитарных болезней / Р.Т.Сафиуллин, А.В.Семенычев // Ветеринария. – 2012. – № 10. – С. 9–12.

11.Сафиуллин, Р.Т. Эффективное средство при кровопаразитарных болезнях животных – Дипрокарб / Р.Т.Сафиуллин [и др.] // Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями: материалы докл. науч. конф. Вып.16. – М., 2015. – С. 401–404.

1ФГБОУ ВО «Казанская государственная академия ветеринарной медицины имени Н.Э.Баумана», г.Казань (420029, г.Казань, Сибирский тракт,35, e-mail: gtr110285@rambler.ru).

2Казанский кооперативный институт, г.Казань (420087, Казань, ул.Даурская, 32, e-mail: ya40360@mail.ru).

Целью исследований cтало изучение кишечных нематодозов лошадей в хозяйствах Республики Татарстан. При гельминтоовоскопическом исследовании 154 лошадей в возрасте от 3 мес. до 8 лет в хозяйствах «Агро-5» и ООО «Мирас» было установлено широкое распространение кишечных нематодозов. Экстенсивность инвазии (ЭИ) нематодами желудочно-кишечного тракта лошадей составила в среднем 79,2%. Наиболее сильно были инвазированы лошади из «Агро-5» (93,3%), так как в данном хозяйстве в течение 2-х лет не проводили дегельминтизацию животных. В ООО «Мирас» ЭИ составила 77,0%, в данном хозяйстве долгое время для дегельминтизации использовали один и тот же препарат и в результате появились устойчивые изоляты паразитов. Моноинвазии в хозяйствах являются преобладающими у лошадей и составляют 48,3%, а микстинвазии – 15,6%. Из возбудителей моноинвазий превалирующими являются нематоды подотряда Strongylata, при этом экстенсинвазированность в ООО «Мирас» составила 49,3%, а в «Агро-5» – 33,3%. Пораженность лошадей нематодами Parascaris eguorum была несколько ниже и колебалась от 12,9 до 13,3%. Наименьший показатель ЭИ был у нематод Oxyuris equi, которую регистрировали лишь у 5 (3,6%) лошадей в хозяйстве ООО «Мирас» и у 1 (6,7%) животного из «Агро-5». Интенсивность инвазии нематодозами в среднем составила при стронгилятозной инвазии – 63,5±10,7, параскариозной– 16,9±3,5, оксиурозной 5,5±2,9 яиц/г. Микстинвазии составляют – 15,6%, они были представлены яйцами Strongylata + Parascaris eguorum – 18,8% и яйцами Strongylata + Oxyuris equi – 0,65%. Таким образом, в обследованных нами хозяйствах наиболее сильно были инвазированы лошади из «Агро-5», у животных преобладают моноинвазии, представленные нематодами подотряда Strongylata. 

1. Ивашкин, В.М. Определитель гельминтов лошадей / В.М.Ивашкин, Г.М.Двойнос. – Киев: Наукова Думка, 1984. – 164 с. 

2. Канокова, А.С. Гельминты лошадей и их сородичей в Кабардино-Балкарской Республике / А.С.Канокова // Бюл. ВИГИС. – 2003. – Вып. 53. – С. 213–217. 

3. Кленова, И.Ф. Гельминтозы лошадей и меры борьбы с ними / И.Ф.Кленова, В.В.Горохов, Л.А.Бундина // Ветеринария. – 2001. – № 10. – С. 26–29.

4. Распространение гельминтозов у лошадей табунного содержания в Республике Саха (Якутия) / Л.М.Коколова, Л.Ю.Гаврильева, З.К.Иванова и [др.] // Российский паразитологический журнал. – 2014. – № 3. – С. 30–33.

5. Котельников, Г.А. Диагностика гельминтозов животных / Г.А.Котельников. – М.: Колос, 1974. – 240 с.

6. Сидоркин, В.А. Лечение паразитозов лошадей ивермеком / В.А.Сидоркин, Г.А.Сулейманов // Российский паразитологический журнал. – 2010. – № 3. – С. 98–101. 

7. Якубовский, М.В. Нематодозы лошадей Белоруссии / М.В.Якубовский, В.И.Длубаковский // Ветеринария. – 2005. – № 1. – С. 35–37.

8. Proudman, C.J. Control intestinal parasites in horses / C.J.Proudman, J.B.Matthews // In practice. – 2000. – Vol. 22, № 1. – P. 90–97.

Сибирский научно-исследовательский институт птицеводства – филиал Федерального государственного бюджетного научного учреждения «Омский аграрный центр» (СибНИИП – филиал ФГБНУ «Омский АНЦ»), с.Морозовка (644555, Омская область, с.Морозовка, ул.60 лет Победы, д. 1, , тел. +7(3812) 937-272, e-mail: vet@sibniip.ru).

Особое внимание заслуживают инфекционные болезни, связанные с поражением респираторного тракта, при которых посредством воздушно-капельной передачи происходит быстрое распространение возбудителей на значительное поголовье птицы, независимо от системы содержания. Респираторные инфекции часто протекают в ассоциированной форме, что затрудняет диагностику и снижает эффективность лечения. По результатам эксперимента, в производственных условиях испытана наиболее эффективная схема лечения цыплят-бройлеров при ассоциативной респираторной инфекции с использование настойки прополиса (100 г прополиса настаивают в 80%-ном спирте, полученный раствор, доводят до 1000 мл водой). Исследования проведены в отделе ветеринарии СибНИИП и птицеводческом предприятии Омской области на 22-дневных цыплятах-бройлерах кросса «Росс-308» с клиническими признаками респираторной инфекции, подтвержденной бактериологическим исследованием. Новая схема лечения включает применение настойки прополиса в дозе 1 мл/1 л воды совместно с антибиотиком широкого спектра действия методом выпаивания в течение пяти дней в сочетании с аэрозольным применением настойки прополиса (разведение 1:20 1 л/100 м3 помещения экспозиция 60 мин.) в течение трёх дней подряд. В контрольной группе применяли тот же антибиотик, аэрозольно – дезинфектант. Применение разработанной схемы для лечения цыплят-бройлеров при ассоциативной респираторной инфекции при сравнении с контролем уменьшает количество патогенной и условно-патогенной микрофлоры, восстанавливает физиологические процессы и обмен веществ, повышает естественную резистентность, снижает негативного влияния антибиотиков на организм птиц и ускоряет сроки их выздоровления. Это способствует повышению сохранности, среднесуточному приросту живой массы при снижении затрат корма на 1 кг прироста и увеличению экономической эффективности ветеринарных мероприятий на один рубль затрат.

1. Бессарабов, Б.Ф. Лабораторная диагностика клинического и иммунобиологического статуса у сельскохозяйственной птицы [Текст] / Б.Ф.Бессарабов, С.А.Алексеева, Л.В.Клетикова. – М.: Колос, 2008. – 152 с.

2. Гофман, А.А. Бактерицидная активность прополиса на возбудителей респираторных инфекций птиц/ А.А.Гофман, С.Б.Лыско, А.П.Красиков // Современные тенденции научного обеспечения в развитии ПАК: фундаментальные и прикладные исследования: материалы науч.-практ.конф. – Омск, 2016. – С. 251–254.

3. Мониторинг заразных болезней птиц в Омской области / А.А.Гофман, А.В.Портянко, С.Б.Лыско, А.П.Красиков // Птицеводство. – 2017. – № 9. – С. 34–38.

4. Госманов, Р.Г. Практикум по ветеринарной микробиологии и иммунологии: учеб.пособие / Р.Г.Госманов, Н.М.Колычев, А.А.Барсков. – Омск: Издательский дом «Лео», 2008. – 312 с.

5.Профилактика респираторных инфекций птиц в инкубаторе / А.А.Гофман, А.В.Портянко, С.Б.Лыско, А.П.Красиков // Птицеводство. – 2017. –№ 6. – С. 31–36.

6. Лабораторные исследования в ветеринарии. Бактериальные инфекции / под ред. Б.И.Антонова. – М.: Агропромиздат, 1986. – 352 с.

7.Лыско, С.Б. Схемы профилактики и лечения респираторного и ассоциативного микоплазмоза птиц: дис. … канд. вет. наук / С.Б.Лыско. – Омск, 2005. – 130 л.

8. Мониторинг эпизоотической обстановки по инфекционным болезням птиц в Западно-Сибирском регионе и Алтайском крае / А.П.Красиков [и др.] // Роль ветеринарного образования в подготовке специалистов агропромышленного комплекса: сб. науч. тр. ИВМОмГАУ. –Омск, 2003. –С.163–171.

ФГБНУ «Прикаспийский зональный научно-исследовательский ветеринарный институт», г.Махачкала (367000, Дагестан, Махачкала, ул.Дахаева,88; тел. +7(722) 68-27-01, e-mail: pznivi@bk.ru).

Работа проведена в ПК «Ремонтники» Гергебильского района Республики Дагестан на овцематках дагестанской горной породы, в возрасте от 3 до 5 лет. Целью работы явилось изучение роли золотистого стафилококка в возникновении, течении и развитии мастита у овцематок после экспериментального заражения. Суточную культуру овцематкам вводили интрацистернально, в количестве 3 млрд. микробных клеток в правую долю, а левая – служила контролем. Проведенными исследованиями установлено, что при интрацистернальном заражении лактирующих овцематок живой суточной культурой золотистого стафилококка, две овцематки пали в течение 24 часов после заражения. У одной овцематки до 12 ч наблюдалась субклиническая форма воспаления, которое закончилось полным выздоровлением и восстановлением функции молочной железы. У 9 подопытных овцематок воспаление вымени начало развиваться как субклиническое, у семи животных заболевание перешло в клиническую форму, у 7 животных осложнилось гангреной и атрофией зараженной доли. При бактериологическом исследовании секрета молочной железы, маточной слизи заболевших овцематок при экспериментальном заражении, а также содержимого молочной железы, матки, печени и почек от павших овцематок была выделена микрофлора, идентичной взятая до заражения. По результатам исследований можно сделать вывод, что молочная железа у сельскохозяйственных животных хоть и имеет свою автономность, мастит – заболевание всего организма, основным этиологическим фактором которого является микроорганизм, его вирулентность и патогенность.

1. Алиев, А.И. Гангренозный мастит овец в Дагестане и меры борьбы с ним / А.И.Алиев // Сборник. науч. тр. Азербайджанского сельскохозяйственного института. Т. 2. – Махачкала, 1968. – С. 28–32. 

2. Алиев, А.Ю. Формы проявления мастита у овец / А.Ю.Алиев // Научное и кадровое обеспечение инновационного развития агропромышленного комплекса: материалы Междунар. науч. конф. – Казань, 2013. – С. 43–46. – (Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. Том. 214).

3. Гомбоев, Б.Н. Роль условно-патогенной микрофлоры при неспецифических маститах овцематок / Б.Н.Гомбоев, Р.З.Сиразиев // Сибирский. вестник сельскохозяйственной науки. – 2014. – № 4. – С. 90–96. 

4. Никитин, В.Я. Некоторые вопросы этиопатогенеза маститов у овец / В.Я.Никитин // Труды Ставропольского сельскохозяйственного института. Выпуск 29. – Ставрополь, 1968. – С. 253–258. 

5. Никитин, В.Я. Профилактика и лечение маститов у овец / В.Я.Никитин // Ветеринария. – 1969. – № 6. – С. 71–74. 

6. Рамазанов, С.Д. Маститы овец / С.Д.Рамазанов // Овцеводство. – 1991. – № 4. – С. 40–41. 

7. Рустамов, И.С. Сравнительная оценка способов лечения овец, больных маститами: автореф. дис. … канд. вет. наук / И.С.Рустамов. – Оренбург, 2000. – 20 с. 

8. Ургуев, К.Р. Диагностика и меры борьбы с болезнями овец: справочник / К.Р.Ургуев, А.М.Атаев. – Махачкала, 2004. – 164 с.

9. Egan, I. Mastitis a review. – Irisch / J.Egan // Veter. News. – 1984. – Vol. 1, № 3. – P. 5–18. 

10. Driest, M. Verlaufs untersuchungen des endotoksin spiegels in blut und milch von kuhen mit gastrointestihalen storungen unter besonderer berucksichtigung der pathogenese der Kolimastitis / M.Driest // Beitrage. – 1988. – № 5. – Р. 101–103.. 

11. Vasil, M. Аetology of mastitis and enterotoxin production by Staphylococcus sp. Isolated from milk of two sheep herds / M.Vasil // Slovak. of animal science. – Nitra, 2007. – Vol. 4, № 4. – P. 189–195.

12. Genetic differences among Staphylococcus aureus isolates from dairy ruminant spesies A single-dya DNA microarray approach / E.Vauter [et al.] // Veterinary Microbiology. – 2009. – Vol. 133. – № 1/2. –Р. 105–114.

1ФГБОУ ВО «Нижегородская государственная сельскохозяйственная академия», г.Нижний Новгород (603107, г.Нижний Новгород, пр. Гагарина, 97, e-mail: anatomifarmitox@mail.ru).

2Всероссийский научно-исследовательский институт физиологии, биохимии и питания животных – филиал Федерального государственного бюджетного научного учреждения «Федеральный научный центр животноводства – ВИЖ имени академика Л.К.Эрнста», Боровск (249013, г.Боровск, пос. Институт, e-mail: vniifbib@mail.ru).

Представлены результаты исследований физиолого-биохимических и морфологических показателей крови новорожденных телят после применения препаратов «Синэстрол 2%» в дозе 0,8 мл на животное однократно подкожно в область лопатки, затем препарата «Ронколейкин» в дозе 0,8 мл 400000 МЕ на животное однократно подкожно в область шеи глубокостельным коровам-матерям за 3-6 дней до отела. Применение препаратов благоприятно отразилось на состоянии здоровья телят. При этом их состав крови улучшился к суточному возрасту: уровень общего белка был выше на 18,5% (P<0,05) по сравнению с контрольной группой телят, альбуминов на 39,4% (P<0,05), альфа-глобулинов на 13,6% (P<0,05), гамма-глобулинов на 35,4% (P<0,05), количество лейкоцитов было выше на 9,7% (P<0,05). Через 10 сут после рождения у телят подопытных групп снизилось содержание альбуминов, альфа- и гамма-глобулинов, но оно было достоверно выше у телят опытной группы. Количество лейкоцитов было выше у телят опытной группы, при этом содержание отдельных видов оставались сходными с контрольными, через 10 сут количество лейкоцитов у телят опытной группы было выше в основном за счет лимфоцитов.

1. Егорова, В.Н. Роль эндогенного интерлейкина-2 в регуляции иммунитета животных / В.Н.Егорова, А.Н.Моисеев, П.И.Барышников // Ветеринария. – 2012. – № 12. – С. 16–18.

2. Захурдаева, Л.Д. Эстрогены: биологические и фармакологические эффекты / Л.Д.Захурдаева // Медицинские аспекты здоровья женщин. – 2010. – № 8 (37). – С. 41–51.

3. Зубович, В.К. Гормональный криз новорожденных / В.К.Зубович. – Минск: Беларусь, 1978. – 112 с.

4. Кондрахин, И.П. Методы ветеринарной клинической лабораторной диагностики: справочник / И.П.Кондрахин. – М.: КолосС, 2004. – 520 с.

5. Инфекционные заболевания: влияние Ронколейкина на неспецифические факторы иммунитета / А.Н.Моисеев, Е.Д.Сахарова, М.В.Островский [и др.] // Ветеринарный доктор. – 2009. – № 8. – С. 15–16.

6. Гормональная регуляция тимической дифференцировки клеток при беременности (обзор) / Е.Г.Орлова [и др.] // Вестник Пермского университета. – 2016. – Вып. 4. – С. 395–401.

7. Татарчук, Т.Ф. Эндокринная гинекология / Т.Ф.Татарчук, Я.П.Сольский; Институт педиатрии, акушерства и гинекологии АМН Украины. – Киев: Заповгг, 2003. – 300 с.

8. Ширшев, С.В. Влияние женских половых стероидных гормонов на микробицидную активность нейтрофилов // С.В.Ширшев, И.В.Некрасова // Проблемы эндокринологии. – 2010. – № 1. – С. 26–30.

9. Ширшев, С.В. Влияние репродуктивных гормонов на основные функции нейтрофилов человека / С.В.Ширшев, Е.М.Куклина, И.В.Бессонова // Вестник Пермского университета. – 2004. – Вып. 2. – С. 174–176.

10. Ширшев, С.В. Влияние эстрадиола на фагоцитарную и окислительную активность моноцитов и нейтрофилов / С.В.Ширшев, Е.М.Куклина, У.С.Гудина // Вестник Пермского университета. – 2008. – Вып. 9 (25). – С. 96–99.

11. Balkwill, F. Cytokine Cell Biology / F.Balkwill. – Oxford, England: Oxford University Press, 2001. – 272 p.

12. Inducible IL-2 production by dendritic cells revealed by global gene expression analysis / F.Granucci, C.Vizardelli, N.Pavelka [et al.] // Nat. Immunol. – 2001. – Vol. 2. – P. 882–888.

13. Smith, K.A. Interleukin-2: inception, impact and implication / K.A.Smith // Science. – 1998. – Vol. 240. – P. 1169.

14. Intestinal Absorption of Colostral Lymphoid Cells in Newborn Piglets / S.Tuboly, S.Bernath, R.Glavits, I.Medveczky // Veterinary Immunology and Immunopathology. – 1998. – № 20. – P. 75–85.

Главное управление ветеринарии Кабинета Министров Республики Татарстан, г.Казань (420111, г.Казань, ул. Федосеевская, 36, а/я 74,тел.: +7 (843) 221-77-47, е-mail: guv@tatar.ru).

Ветеринарная санитария является одной из важнейших отраслей ветеринарии, занимающаяся разработкой и внедрением в практику животноводства мероприятий, направленных на профилактику и ликвидацию болезней животных, на охрану людей от возбудителей инфекций и инвазий, общих человеку и животным, а также обеспечивающих получение продуктов животноводства и кормов высокого санитарного качества. Научные данные и практический опыт показывают, что мероприятия по уничтожению микроорганизмов – дезинфекция, дезинсекция, стерилизация являются главным и надежным средством профилактики болезней у животных. При этом, необходимо отметить, что наряду с лабораторными исследованиями широты спектра антимикробного действия важным является испытание отобранных препаратов в производственных условиях. Целью исследований явилось проведение производственных испытаний импортзамещающего дезинфицирующего средства Рекодез. Исследованиями, проведенными в лабораторных условиях с использованием тест-объектов, показана высокая дезинфицирующая активность препарата Рекодез в отношении грамотрицательных, грамположительных, спорообразующих микроорганизмов, грибковой флоры и M.tuberculosis. Производственными испытаниями установлено, что при применении 1% раствора препарата Рекодез при экспозиции 2 ч при бактериологическом исследовании проб взятых после дезинфекции не выявлено санитарно-показательных микроорганизмов при обильном росте в контрольных, взятых до дезинфекции. Качество проведенной дезинфекции удовлетворительное. При проведении производственных испытаний препарата Рекодез в неблагополучных по туберкулезу хозяйствах показано, что при применении 2%-ного раствора при экспозиции 2 ч не выявлено роста санитарно-показательных микроорганизмов – микобактерий и стафилококков при заключительной дезинфекции, что констатирует удовлетворительные качества дезинфекции.

1. Гатиатуллин, И.Г. Изыскание пенообразующих дезинфицирующих средств для применения в птицеводстве: автореф.дис. ... канд.биол.наук: 03.00.07, 16.00.03 / И.Г.Гатиатуллин. – Казань, 2002. – 20с.

2. Готовский, Д.Г. Оценка токсичности и биоцидных свойств дезинфицирующего средства «Эстадез с 3–2–1» / Д.Г.Готовский, И.В.Фомченко // Ученые записки УО Витебская ордена Знак почета Государственная академия ветеринарной медицины. – 2012. – Т. 48, Вып. 1. – С. 18–22.

3. Ерохин, В.В. Строение микобактерий туберкулеза по данным электронной микроскопии / В.В.Ерохин // Проблема туберкулеза. – 1982. –№ 3. – С. 55–59.

4. Зарипов, М.Р. Разработка пенообразующего дезинфицирующего средства для промышленного птицеводства: автореф. дис. … канд. биол. наук: 03.00.07, 16.00.03 / М.Р.Зарипов. – Казань: ФГНУ ВНИВИ, 2004. – 26 с.

5. Инструкция по проведению ветеринарной дезинфекции объектов животноводства. – М.: ВО Агропромиздат, 1989. 

6. Методические указания о порядке испытания новых дезинфицирующих средств для ветеринарной практики: утв. ГУВ Госагропрома СССР 7.01.1987 г. – М., 1987.

7. Николаенко, В.П. Бактерицид - эффективное средство для профилактики инфекционных болезней птицы / В.П.Николаенко // Био. – 2003. – №1. – С. 6–8.

8. Попов, Н.И. Дезинфекция: роль, значение и назначение при инфекционной патологии свиней / Н.И.Попов // Вестник Омского государственного аграрного университета. – 2012. – № 4 (8). – С. 79–86.

9. Попов, Н.И. Новые отечественные дезинфицирующие препараты для ветеринарно-санитарной обработки транспортных средств, используемых для перевозки животноводческих грузов / Н.И.Попов, С.А.Мичко, М.П.Бутко // Проблемы ветеринарной санитарии, гигиены и экологии. – 2015. – №2 (14). – С. 32–36.

10. Правила проведения дезинфекции и дезинвазии объектов государственного ветеринарного надзора: утв. Министерством сельского хозяйства Российской Федерации 15 июля 2002 г. N 13-5-2/0525. – М., 2002. – 5 с.

11. Равилов, А.З. Натопен – дезинфектант широкого спектра антимикробного действия / А.3.Равилов, В.С.Угрюмова, А.П.Савельчев // Ветеринария. – 2010. – № 12. – С. 8–12.

12. Сборник инфекционных и других болезней животных (с описанием). Нормативно-правовые документы и методических указаний по осуществлению деятельности государственной ветеринарной службы Российской Федерации. Том I. – М, 2013.

13. Новые импортозамещающие дезинфицирующие препараты для животноводства и птицеводста [Текст] / Р.С.Яруллин [и др.] //Аграрная тема. – 2015. – №8. – С.17–19.

14. Угрюмова, В.С. Клинофорт люкс – универсальное дезинфицирующее средство / В.С.Угрюмова, P.X.Равилов // Ветеринария. – 2013. – № 6.– С. 20–22.